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TB Green® Premix Ex Taq™ (Tli RNaseH Plus) |
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應用Thermal Cycler Dice Real Time System III and Lite擴增儀的操作方法 |
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1. 按下列組份配制PCR反應液(反應液配制請在冰上進行)。 |
試劑 |
使用量 |
終濃度 |
TB Green Premix Ex Taq(Tli RNaseH Plus)(2X) |
12.5 μl |
1X |
PCR Forward Primer(10 μM) |
0.5 μl |
0.2 μM*1 |
PCR Reverse Primer(10 μM) |
0.5 μl |
0.2 μM*1 |
DNA模板(<100 ng)*2 |
2 μl |
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滅菌水 |
9.5 μl |
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Total |
25 μl*3 |
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*1 通常引物終濃度為0.2 μM可以得到較好結果。反應性能較差時,可以在0.1~1.0 μM范圍內調整引物濃度。
*2 DNA模板的添加量通常在100 ng以下。因不同種類的DNA模板中含有的靶基因的拷貝數(shù)不同,必要時可進行梯度稀釋,確定合適的DNA模板添加量。另外,2 Step RT-PCR反應的cDNA(RT反應液)作為模板時的添加量不要超過PCR反應液總體積的10%。
*3 建議反應液體積為25 μl。 |
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2. 進行Real Time PCR反應。 |
建議采用下列圖表顯示的兩步法PCR反應程序。由于使用Tm值較低的引物等原因,兩步法PCR反應擴增性能較差時,可以嘗試進行三步法PCR擴增反應。有關PCR的具體反應條件請參照「實驗條件的選擇」。 |
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兩步法PCR擴增標準程序: |
Stage 1:預變性 |
Repeat:1 |
95℃ 30秒 |
Stage 2:PCR反應 |
Repeat:40 |
95℃ 5秒 |
60℃ 30秒 |
Stage 3:Dissociation |
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◆特別提示:
本制品中使用的TaKaRa Ex Taq HS是利用抗Taq抗體的Hot Start用DNA聚合酶,與其他公司的化學修飾型Hot Start用DNA聚合酶相比,不需要PCR反應前的95℃、5~15分鐘的酶的活性化反應。如果高溫處理時間過長,會使酶的活性下降,其PCR的擴增效率、定量準確度等都會受到影響。如果在PCR反應前進行模板的預變性,通常設定為95℃、30秒。
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3. 實驗結果分析。 |
反應結束后確認Real Time PCR的擴增曲線和融解曲線,進行PCR定量時制作標準曲線等。分析方法參見儀器的操作手冊。 |