經(jīng)過驗(yàn)證,同源序列少于12個堿基或者多于20個堿基克隆效率都會明顯降低。因此推薦附加15 bp
同源堿基序列。
15 bp同源序列必須與線性化載體最末端的15 bp完全相同(更多信息請參考操作手冊)。如果
15 bp同源序列錯開幾個堿基,In-Fusion反應(yīng)可能也可以起作用,但是在Clontech沒有進(jìn)行驗(yàn)證。
是的。例如,在15 bp同源序列和目的基因序列之間引入Kozak序列(CCACC),實(shí)驗(yàn)結(jié)果不會受到
任何影響。同樣也可以包含限制性酶切位點(diǎn)或者融合標(biāo)簽。PCR引物按順序應(yīng)該包含以下序列
(listed 5' to 3'): 15 bp同源序列,Kozak序列或者限制性酶切位點(diǎn),目的基因序列。
閱讀框是由引物序列來決定的。例如,創(chuàng)建一個融合蛋白質(zhì)時,如果引物中15 bp同源序列對應(yīng)于
第一個目的基因的最后5個密碼子,那么您需要將第二個目的基因起始密碼子放置在同源序列的最
后一個密碼子之后(也即是同源序列的3'端),以保證第二個目的基因與第一個目的基因在同一個
讀碼框內(nèi)。如果讀碼框發(fā)生滑動的話,您可以在15 bp 同源序列之后和目的基因第一個密碼子之前
簡單添加1-2個額外堿基就可以。
在載體內(nèi)部而不是在臨近載體線性化的位點(diǎn)發(fā)生重組事件的概率極低。為了驗(yàn)證這一點(diǎn),我們采用
Sal I和Hind III雙酶切pDNR-Dual載體。這樣,In-Fusion PCR引物的15 bp同源序列始終包含編碼
loxP位點(diǎn)的序列。盡管pDNR-Dual在氯霉素抗性基因的兩側(cè)有兩個loxP位點(diǎn),只有不到1%的克隆
發(fā)生了錯誤。因此,即使同源序列在載體序列上出現(xiàn)多次,錯誤重組事件發(fā)生的可能性也非常小。
答案是否定的,In-Fusion克隆反應(yīng)并不依賴于5'磷酸基團(tuán),因此采用常規(guī)的引物擴(kuò)增得到的兩個
PCR產(chǎn)物即可進(jìn)行有效的In-Fusion克隆反應(yīng)。
脫鹽處理獲得的引物即可滿足In-Fusion有效克隆的高質(zhì)量要求。無需進(jìn)行膠純化或者HPLC純化。
是的,任何載體均適用。經(jīng)過驗(yàn)證In-Fusion酶可以有效作用于多種載體類型。我們將 2.5 kb的
PCR片段成功克隆到了33 kb的腺病毒載體中。值得注意的是,大載體(>10 kb)的克隆效率會有
所下降。
是的,所需載體必須是線性化的。進(jìn)行In-Fusion克隆反應(yīng)的線性化載體可以通過酶切處理(單酶
切或者雙酶切)的方式獲得,也可以通過反向PCR擴(kuò)增獲得。In-Fusion反應(yīng)不依賴于5’磷酸基
團(tuán),因此只要擁有15 bp同源序列,即使是沒有經(jīng)過修飾的兩個PCR產(chǎn)物也可以連接在一起。
我們建議采用雙酶切而不是單酶切方法處理載體,以最大限度減少載體自連產(chǎn)生的背景。在限制
性內(nèi)切酶不產(chǎn)生星活性的前提條件下,建議酶切時間為3-24小時。反向PCR擴(kuò)增載體片段,然后
采用Cloning Enhancer進(jìn)行純化處理,這也是一個非常有效的載體線性化的方法。
頁面更新:2015-01-06 10:01:36